2023年2月，中国药学会系列期刊《中草药》刊发论文“荆防颗粒对急性醉酒模型小鼠的解酒作用及作用机制”，现转发如下，仅供学习讨论。

自古以来，酒精与人类的文化生活密切相关。然而过量饮酒会引起急性、慢性酒精中毒，给身体带来许多危害，如增加心脏负担、破坏肝细胞结构，引起消化、心血管及神经系统在内的多组织器官损伤，导致人体出现头昏、恶心、呕吐、动作迟缓、记忆力减退、昏迷等症状，严重时可致死亡[1-2]。为缓解单次过量饮酒给机体造成的损害，提高大众健康质量，解酒护肝产品的研发成为研究热点。荆防颗粒源自荆防败毒散，该方最早记载于明代张时彻《摄生众妙方》，由荆芥、防风、羌活、独活、柴胡、川芎、桔梗、前胡、枳壳、茯苓、甘草11味中药组成，具有发汗解表、散风祛湿之功效[3-4]。研究报道，荆防颗粒连续ig给药8周对四氯化碳诱导的小鼠肝纤维化有明显保护作用，可降低模型小鼠血清天冬氨酸氨基转移酶（aspartate aminotransferase，AST）、丙氨酸氨基转移酶（alanine aminotransferase，ALT）活性及总胆汁酸（total bile acid，TBA）和三酰甘油（triglyceride，TG）水平，并减轻肝细胞变性、坏死及炎性细胞浸润；同时发现荆防颗粒能降低肝组织丙二醛（malondialdehyde，MDA）含量，提高超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）活性和谷胱甘肽（glutathione，GSH）水平[5]，表明荆防颗粒对机体主要解毒器官——肝脏有一定保护作用。荆防败毒散加减方单次预防给药能明显降低急性酒精中毒小鼠醉酒率并延长醉酒潜伏期；单次治疗给药可降低急性酒精中毒小鼠血液乙醇浓度，提高小鼠肝脏和胃组织乙醇脱氢酶（alcohol dehydrogenase，ADH）、SOD活性，降低MDA含量，促进酒精代谢，表现出良好解酒促醒作用[6]。

上述实验结果表明荆防败毒散对四氯化碳和酒精引起的肝脏损伤有保护作用，本课题组既往研究亦发现荆防颗粒能降低醉酒小鼠血液中乙醇含量，其解酒作用可能与激活磷脂酰肌醇3-激酶（phosphatidylinositol 3-kinase，PI3K）/蛋白激酶B（protein kinase B，Akt）通路有关[7]。一般而言，摄入机体的酒精90%以上会经胃肠道吸收，仅少量通过呼吸、汗液、尿液等排出体外。由胃肠道吸收的部分酒精在胃肠道的首过代谢下被氧化，更多的酒精则是通过门静脉进入肝脏，经肝脏内丰富的酶进行代谢[8]。此外，进入血液循环后的少量酒精还可透过血脑屏障，由大脑中的酶系统代谢。总之，进入肝脏的酒精通过氧化途径和非氧化途径进行代谢，前者主要涉及ADH和微粒体乙醇氧化系统（microsomal ethanol oxidizing system，MEOS）如细胞色素P450第二家族E亚型多肽1（cytochrome P4502E1，CYP2E1）和过氧化氢酶（catalyse，CAT），后者参与酒精代谢的比例较低，一般是在酶介导下酒精与内源性代谢物如葡萄糖醛酸、硫酸盐、磷脂和脂肪酸的结合，生成相应代谢物[9]。本研究基于前期研究基础及部分人群服用体验结果，构建小鼠急性醉酒模型，拟进一步明确荆防颗粒的解酒效应表现及可能相关的作用机制，旨在为荆防颗粒临床应用的拓展提供一定科学依据。

01材料

1.1动物

SPF级昆明种小鼠，雌雄各半，体质量18～22g，购自北京斯贝福实验动物有限公司，许可证号SCXK（京）2019-0010。动物饲养于成都中医药大学药学院动物观察室，许可证号SYXK（川）2020-124。所有动物均自由进食进水，在明暗各12h的环境中饲养，光照时间为8:00～20:00时，环境温度保持在（22±2）℃。本实验符合动物实验伦理学要求，获成都中医药大学实验动物伦理委员会的批准（批准号20200320）。

1.2药品与试剂

荆防颗粒（批号0012008009）购自山东新时代药业有限公司；N-乙酰-L-半胱氨酸（N-acetyl-L-cysteine，NAC，批号824O033）购自北京索莱宝科技有限公司；56°红星二锅头（批号20191204）购自北京红星股份有限公司；CAT检测试剂盒（批号071321220513）、烟酰胺腺嘌呤二核苷酸（nicotinamide adenine dinucleotide，NAD+）/还原型辅酶I（nicotinamide adenine dinucleotide，NADH）检测试剂盒（批号052021220128）购自碧云天生物技术有限公司；小鼠ADH试剂盒（批号8AKF434LSX）购自武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司；ADH1兔抗（批号5295S）、p62兔抗（批号23214S）购自美国CST公司；CYP2E1兔抗（批号54i7601）购自Affinity Antibody公司；乙醛脱氢酶2（acetaldehyde dehydrogenase 2，ALDH2）兔抗（批号323861）、微管相关蛋白1轻链3（microtubule-associated protein1 light chain 3，LC3）兔抗（批号334372）购自上海艾比玛特医药科技有限公司；β-actin兔抗（批号AC220227008）、甘油醛-3-磷酸脱氢酶（glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase，GAPDH）兔抗（批号AC2111013A）、β-tubulin兔抗（批号AC2101019B）购自武汉赛维尔公司；HRP标记的山羊抗兔IgG抗体（批号BST17G08A17H54）购自博士德生物公司。

1.3仪器

MDF-U50V型超低温冰箱（日本Sanyo公司）；UPT-2-5T型超纯水仪（成都优普电子产品有限公司）；ZB-200型疲劳转棒仪（成都泰盟软件有限公司）；KZ-II型高效组织研磨仪（武汉赛维尔生物科技有限公司）；ST16R型低温高速冷冻离心机（美国Thermo Fisher Scientific公司）；DYY-6C型电泳仪电源（北京市六一仪器厂）；ChemiDocXRS+化学发光成像系统、ImageLab凝胶分析系统（美国Bio-Rad公司）。

02 方法

2.1荆防颗粒预防给药对小鼠的解酒作用

将SPF级昆明种小鼠适应性喂养3d后，按体质量分层随机分为模型组和荆防颗粒高、中、低剂量（15、10.5、5.25g/kg）组，每组20只，雌雄各半。实验前小鼠禁食不禁水12 h，实验当日各给药组ig相应药物（20mL/kg），模型组ig等体积生理盐水，给药30min后，各组小鼠ig56°红星二锅头（17mL/kg），随即观察小鼠行为状态，小鼠醉酒以翻正反射消失为标准：小鼠背向下的姿势保持30s以上，则认为翻正反射消失，即为醉酒，计算各组小鼠醉酒率。记录各组小鼠醉酒潜伏期时间（从ig白酒到翻正反射消失的时间）和睡眠时间。以小鼠ig白酒的时间开始计时观察8h，若8h后醉酒状态仍然未恢复的小鼠，按照480min进行计算。根据本次实验中荆防颗粒3个剂量组对急性醉酒模型小鼠醉酒率的影响结果，选择具有明显效应的2个剂量开展后续醉酒小鼠在棒时间及胃黏膜损伤实验研究，并重复观察小鼠醉酒率。

醉酒率＝醉酒小鼠只数/该组小鼠总只数

2.2荆防颗粒预防给药对醉酒小鼠在棒时间及胃黏膜损伤的影响

SPF级昆明种小鼠适应性喂养3d后，按体质量分层随机分为4组，雌雄各半，其中对照组8只，4个处理时间批次（给酒后30、60、90、120min）的模型组50只、荆防颗粒15 g/kg组40只及荆防颗粒10.5g/kg组40只。各组小鼠禁食不禁水12h后，实验当日各给药组ig相应药物（20mL/kg），模型组ig等体积生理盐水，给药30min后，除对照组外，其余各组小鼠ig56°红星二锅头（17mL/kg），对照组ig等体积的生理盐水。ig56°红星二锅头（17mL/kg）10min后将未进入醉酒状态的小鼠放在转棒仪上，观察记录小鼠在棒时间，观察时间为2min，超过2min未掉下者按2min计，同法观察对照组小鼠ig生理盐水10min后的在棒时间。4个处理时间批次的小鼠分别于给酒后30、60、90、120min处死并剖取胃，结扎胃部贲门和幽门，以2mL10%福尔马林固定5min后，沿胃大弯剖开，观察酒精对胃黏膜的影响。对照组小鼠同法取样观察。采用半定量分析方法，损伤程度按照整个胃黏膜中肉眼观察到的胃出血点数目作为分级计分标准，见表1。

2.3荆防颗粒预防给药对醉酒小鼠酒精代谢酶活性及自噬相关蛋白表达的影响

SPF级昆明种小鼠适应性喂养3d后，按体质量分层随机分为5组，雌雄各半，分别为对照组8只，模型组12只，荆防颗粒高、低剂量（15、10.5g/kg）组各12只和NAC（300mg/kg）组12只。小鼠禁食不禁水12h后，实验当日各给药组ig相应药物（20mL/kg），对照组和模型组ig等体积生理盐水，给药1h（依据预试验结果）后，除对照组外，其余各组小鼠ig56°红星二锅头（17mL/kg），对照组ig等体积的生理盐水。ig白酒1h（酒后30～60min血液乙醇浓度可达高峰[10]）后小鼠眼眶取血并颈椎脱臼处死，剖取肝脏、胃组织将其冻存备用。取肝脏、胃组织，按试剂盒说明书加入提取液，进行组织研磨，制成10%组织匀浆，检测肝组织中ADH、CAT活力以及肝、胃组织中NAD+/NADH值。

加入RIPA裂解液提取肝组织总蛋白，BCA法测定蛋白浓度，调等浓度后，加上样缓冲液使蛋白变性。蛋白样品经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳，转至PVDF膜，用5%牛血清白蛋白溶液封闭90min，分别加入一抗ADH1（1∶1000）、CYP2E1（1∶1000）、ALDH2（1∶2000）、LC3（1∶1000）、p62（1∶1000）、β-actin（1∶2000）、GAPDH（1∶2000）、β-tubulin（1∶2000），4℃孵育过夜，洗膜3次，每次10min，加入二抗（1∶5000）孵育90min，再次洗膜后在显影成像仪中显色曝光，采用Image Lab6.0.1软件分析条带。

2.4统计学分析

采用SPSS 26.0软件进行数据统计，以表示，计量数据符合正态性分布的采用单因素方差分析（One-way ANOVA）或t检验，不符合正态者则采用非参数检验法分析。

03 结果

3.1荆防颗粒预防给药对小鼠的解酒作用

以小鼠ig白酒至翻正反射消失的时间为醉酒潜伏期，翻正反射消失至翻正反射恢复的时间为小鼠睡眠时间。如表2所示，模型组小鼠的醉酒率为90%，而荆防颗粒（15、10.5、5.25g/kg）组小鼠的醉酒率分别为0、25%、75%，表明荆防颗粒预防给药具有一定解酒作用，尤以15、10.5g/kg剂量组效果明显。后续在棒时间实验中重复观察了15、10.5g/kg剂量组小鼠的醉酒率，结果表明模型组小鼠醉酒率为90%，而荆防颗粒15、10.5g/kg剂量组小鼠醉酒率分别为7.31%、10%；进一步在解酒机制研究实验中，再次观察荆防颗粒对小鼠醉酒率的影响，结果表明模型组、荆防颗粒15、10.5g/kg以及NAC组的醉酒率分别为75%、8%、17%和67%。综上，荆防颗粒15、10.5g/kg预防给药具有明确解酒作用，能显著降低醉酒率。

3.2荆防颗粒预防给药对小鼠在棒时间的影响

转棒实验主要检测啮齿类动物运动功能，当其中枢神经系统损害或药物对其运动协调功能产生影响时，可通过测量动物在滚筒上行走的持续时间评定。小鼠过量饮酒后，中枢神经系统被抑制，协调性会变差，致使小鼠很快从转棒上掉落，在棒时间缩短。如表3所示，与对照组比较，模型组小鼠ig白酒10min后，在转棒仪上的时间明显缩短（P＜0.001），提示动物出现步态、平衡功能障碍；与模型组比较，荆防颗粒能延长模型小鼠的在棒时间。

3.3荆防颗粒对醉酒小鼠胃黏膜的影响

急性大量饮酒会直接损伤胃黏膜，甚至造成胃出血，因此在解酒实验中同时观察荆防颗粒对胃黏膜的保护作用。如图1和表4所示，与模型组比较，小鼠ig白酒后30、60、90、120min，荆防颗粒15、10.5g/kg剂量组小鼠胃黏膜损伤程度有明显减轻表现（P＜0.05、0.01、0.001），小鼠胃黏膜出血表现有所缓解，出血点数显著降低。

3.4荆防颗粒对醉酒小鼠肝、胃组织NAD+/NADH值的影响

NAD是存在于所有细胞中的一种辅酶，包括NAD+（氧化型）和NADH（还原型）2种形式。乙醇代谢过程中，其首先在ADH的作用下氧化成乙醛，此过程中NAD+被还原成NADH。因此通过比较各组NAD+/NADH值，可间接判断ADH活力。如表5所示，与模型组比较，荆防颗粒（15、10.5g/kg）组胃组织NAD+/NADH值均显著降低（P＜0.05），荆防颗粒（15g/kg）组小鼠肝组织NAD+/ NADH值显著降低（P＜0.05），说明荆防颗粒促进了NAD+向NADH的转化，增加了NADH，表明药物可提高ADH对乙醇的代谢能力。

3.5荆防颗粒对醉酒小鼠肝组织ADH、CAT活性的影响

ADH是机体代谢酒精最主要的酶，荆防颗粒可促进NAD+被还原成NADH，提示药物对该酶活性有提高作用；CAT分布非常广泛，在肝脏、肾脏和红细胞中水平高，是清除能导致氧化损伤的过氧化氢的主要场所，乙醇代谢过程中，CAT也参与部分乙醇代谢，同时生成水和氧气。因此对醉酒小鼠肝组织ADH、CAT活力进行检测。如表6所示，与模型组比较，各给药组均可提高小鼠肝组织ADH活力，其中荆防颗粒15g/kg组具有显著性差异（P＜0.05），表明荆防颗粒解酒作用的发挥确与提高ADH活力有关；同时各给药组均能显著提高CAT活力（P＜0.01、0.001），提示荆防颗粒还可通过提高机体抗氧化能力发挥解酒作用。

3.6荆防颗粒对醉酒小鼠肝组织ADH1、ALDH2、CYP2E1蛋白表达的影响

ALDH是酒精氧化途径的第2步，也是代谢引起酒精中毒关键分子——乙醛的唯一酶。当血液及组织液中的酒精浓度＞10mmol/L时，微粒体乙醇氧化系统也参与酒精代谢[11]，其中CYP2E1是该系统中研究最多的酒精代谢酶。因此在明确荆防颗粒对ADH、CAT活性的调节作用后，进一步观察荆防颗粒对醉酒小鼠肝组织中ADH1、ALDH2、CYP2E1蛋白表达的影响，如图2和表7所示，与对照组比较，模型组小鼠肝组织中ADH1蛋白表达水平显著降低（P＜0.01），说明单次过量饮酒可能抑制肝脏正常酒精代谢；与模型组比较，15 g/kg荆防颗粒显著升高醉酒小鼠肝组织ADH1、ALDH2蛋白表达（P＜0.05、0.01），表明荆防颗粒能通过上调ADH、ALDH的表达以促进酒精代谢。此外，模型组小鼠肝组织CYP2E1蛋白表达显著升高（P＜0.01），提示过量饮酒会诱导CYP2E1参与肝脏酒精代谢，而该代谢过程伴随活性氧（reactive oxidative species，ROS）的产生；荆防颗粒和NAC能显著逆转该表现（P＜0.01、0.001），说明荆防颗粒对过量饮酒导致的氧化应激可能具有一定缓解作用。

3.7荆防颗粒对醉酒小鼠肝组织自噬通路LC3及p62蛋白表达的影响

如图3和表8所示，与对照组比较，模型组小鼠肝组织内LC3Ⅱ/LC3I升高，提示急性醉酒模型小鼠肝细胞的自噬可能被激活，启动一定代偿保护效应；与模型组比较，荆防颗粒组LC3Ⅱ/LC3I显著升高（P＜0.01），表明荆防颗粒解酒作用的发挥可能与激活自噬清除异物有关。与对照组比较，醉酒小鼠肝组织中p62蛋白表达上调（P＜0.05），提示模型小鼠肝组织的自噬-溶酶体降解存在障碍；与模型组比较，荆防颗粒能显著促进自噬小体的降解，明显下调p62蛋白表达（P＜0.05）。提示在急性醉酒状态下，荆防颗粒可激活自噬并促进自噬小体降解加速酒精代谢，从而发挥肝脏保护作用。

04 讨论

无论发达还是非发达国家，饮酒是常见的大众行为之一[12]，尤其是当下生活压力日益增长，饮酒更成为大多数人排解压力的方法之一。但饮酒过量，同样会对身体健康造成危害。近年来，急性酒精中毒在临床上也越来越常见。急性酒精中毒，俗称醉酒[13]，中医病名“酒毒”。醉酒是指饮酒过量所引起的急性脏腑功能受损，并出现恶心呕吐、胁腹胀满、易怒易激、行走不稳或谵妄昏迷等症状，属中医常见急症，严重者可发生呼吸循环衰竭，最终导致死亡[14]。目前临床上治疗急性酒精中毒的药物主要有利尿药、蛋白肽类药、提高酒精代谢酶活性类药及护肝养胃类中药4种[15]，然而并无明确适合大众日常生活中有效便捷的解酒药物。已有研究发现荆防败毒散加减及荆防败毒散现代制剂荆防颗粒有良好的解酒防醉作用[6-7]，本研究在前期研究基础上开展其解酒作用与机制研究，进一步丰富其解酒作用研究内容，为其临床应用拓展与二次开发提供一定药理学依据。

小鼠过量饮酒初期呈现呼吸、心率加快等兴奋表现，继而出现体态不稳、共济失调，最后进入昏睡状态[16]。实验中常以翻正反射消失作为判断小鼠是否出现急性酒精中毒（醉酒）表现的标准，即小鼠保持背向下姿势＞30s不恢复可称为醉酒。此外大量饮酒亦会造成动物胃黏膜急性损伤[17]。因目前尚未见性激素对酒精代谢影响的报道，且饮酒行为男女均有，故研究中选用雌雄各半的小鼠开展荆防颗粒的解酒实验研究，结果表明荆防颗粒能显著降低小鼠的醉酒率，延长小鼠醉酒潜伏期，表现出解酒作用，同时给药组无小鼠死亡表现，提示药物具有保护作用；进一步转棒仪实验表明荆防颗粒可延长小鼠的在棒时间，且通过肉眼观察评分发现荆防颗粒组小鼠胃黏膜出血点明显少于模型组小鼠，结合前期研究结果荆防颗粒能显著降低醉酒小鼠血清乙醇含量[7]，可认为荆防颗粒具有解酒防醉作用，并对大量饮酒所致的胃黏膜损伤有一定保护作用。

肝脏是酒精代谢主要器官，通过几种代谢酶和非酶机制将90%以上摄入的酒精代谢成乙醛，随后乙醛进一步被线粒体中的ALDH2和细胞质中的ALDH1氧化为醋酸，最后醋酸经三羧酸循环，彻底氧化为水和二氧化碳排出体外，少部分生成蛋白质、脂肪等大分子物质被机体利用[18]。肝脏中酒精主要经ADH、CAT、CYP2E13种酶代谢生成为乙醛。ADH是一种位于胞质中的锌依赖性酶，其中I类ADH在肝、胃、肾和结肠等组织中表达水平较高，其使用NAD+作为辅助因子，参与肝脏中大部分酒精的氧化。ADH对乙醇的代谢受ADH酶、副产物乙醛水平以及细胞质中NADH与NAD+比率的调节[11]。CAT虽然在酒精代谢过程中贡献较小，但能以H2O2依赖的方式将乙醇氧化为乙醛，研究表明乙醇长期喂养后可使大鼠肝脏CAT活性增加[19]。本研究结果显示，荆防颗粒显著促进醉酒模型小鼠肝、胃组织中NAD+向NADH的转化，并提高肝组织ADH的活性以及ADH1蛋白表达量；同时显著提高模型小鼠肝组织CAT活性。由此可认为，荆防颗粒能通过提高ADH、CAT对酒精的代谢能力，来加快肝脏对酒精的代谢速率，从而发挥良好的解酒防醉作用。此外，酒精可被微粒体乙醇氧化体系氧化，该系统主要涉及CYP2E1[20]，另外2种细胞色素CYP1A2和CYP3A4对微粒体乙醇氧化体系也有贡献，但影响程度较弱[21]。CYP2E1主要在血液酒精浓度较高或长期饮酒的酒精代谢中发挥重要作用，其参与酒精代谢的同时还会促进羟乙基自由基（HER）、羟自由基（OH−）和超氧化物（O2−）等一系列ROS的产生，被认为是酒精诱导肝细胞氧化应激的主要因素之一[22]。本研究结果发现，模型组小鼠肝组织CYP2E1表达显著升高，结合模型小鼠肝组织ADH1表达下降表现，提示过量饮酒后CYP2E1被诱导表达增加，主要负责肝脏中酒精代谢，然而作为肝细胞氧化应激的主要贡献者，以CYP2E1为主导的酒精代谢对肝脏是不利的。荆防颗粒对模型小鼠肝脏CYP2E1表达有明显下调表现，提示其可抑制CYP2E1代谢途径，由此缓解过量饮酒引起的氧化应激所致损伤。ALDH2在代谢饮酒产生的乙醛及减轻氧化应激下脂质过氧化副产物4-羟基壬烯酸的毒性中均发挥着重要作用[23]，本研究结果表明荆防颗粒能显著提高模型小鼠肝组织ALDH2表达量，提示该颗粒在促进乙醇氧化的同时还可加速机体内乙醛代谢，呈现解酒保肝作用。荆防颗粒对肝脏中包括ADH、CAT、CYP2E1、ALDH在内的酒精代谢酶调节作用如图4所示。

氧化应激过程中产生的ROS被认为是自噬的激活物，能够参与诱导自噬的启动，另一方面自噬可作为缓冲系统来控制ROS的水平[24]。前期研究表明荆防颗粒可激活急性醉酒模型小鼠肝组织PI3K/Akt信号通路发挥解酒作用[7]，而已有研究证实肝损伤模型中激活的PI3K/Akt信号通路可上调自噬[25]，且本实验中的急性醉酒模型小鼠肝脏CYP2E1蛋白表达异常升高，而该酶参与酒精代谢的同时会伴随过量ROS的产生，引起氧化失衡，诱导自噬来缓冲控制ROS的损伤。基于此进一步观察荆防颗粒对模型小鼠肝组织自噬的影响，结果显示荆防颗粒可显著升高LC3Ⅱ/LC3I值表现出激活自噬，并显著下调p62蛋白表达表现出促进自噬小体降解的作用，从而发挥保护肝脏作用，研究结果亦与以往结果[7]吻合。

综上，荆防颗粒能显著降低醉酒小鼠醉酒率，并保护过量饮酒造成的胃黏膜损伤，其解酒作用的发挥与提高肝、胃组织ADH对酒精的转化效率，升高肝组织中ADH、ALDH、CAT的表达或活力，促进乙醛代谢，对抗过量饮酒诱发的氧化应激，及激活肝组织自噬与促进自噬小体降解有关。研究结果初步明确了荆防颗粒解酒防醉的作用机制，同时提示对急性酒精性肝损伤可能具有保护作用。然而，本研究存在一些不足之处，如未涉及更多酒精诱导肝脏氧化应激的相关指标，后续可进一步补充荆防颗粒抗氧化的解酒作用机制研究，以丰富荆防败毒散及其制剂荆防颗粒的现代药理研究内容。

利益冲突：所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献（略）

来源：高铭，张霞，罗戴民，杨若聪，饶志粒，曾南．荆防颗粒对急性醉酒模型小鼠的解酒作用及作用机制 [J]. 中草药, 2023, 54(4):1164-1172.